怎样选择特殊杂质分析方法
一般杂质和特殊杂质的区别？
一般杂质和特殊杂质的区别？
区别是： 一般杂质是指在自然界中分布较广泛，在多种药材的采集、收购、加工以及制剂的生产或贮存过程中容易引入的杂质，如酸、碱、水分、氯化物、硫酸盐、铁盐、重金属、砷盐等。
特殊杂质是指在该制剂的生产和贮存过程中，根据其来源、生产工艺及药品的性质有可能引入的杂质。
杂质是一种物质中所夹杂的不纯成分，它们的形态有固体颗粒状、纤维状、软质胶状、液状、气状。
一般我们将杂质含量不超过0.03%的液体视为无杂质。杂质，有的我们可以肉眼看到，而有的就只能在显微镜下看。
沼泽过滤大小石子顺序？
先放大块的后方小块的。过滤箱中以豆石为主。豆石分两种规格，一种是大小1-2cm的，另一种是大小2-3cm的，然后先向沼泽箱中先放入大规格的豆石，再向沼泽箱中放入小规格的豆石。这样大规格豆石的在下面有利于沉淀，小规格豆石在上面，增加过滤效果。
辨别松脂的方法？
在中国大陆目前松脂加工方法有滴水法与蒸汽法两大类。
滴水法系将松脂装在蒸馏锅内，-面用直接火加热，- 面滴入清水，加速松节油汽化，蒸出松节油而得松香。
滴水法松香又叫土法松香，由于设备及工艺简单， 质量不稳定，色泽较深或软化点较低，但价格便宜。
蒸汽法系使用过热蒸汽生产松香，质量稳定软化点高， 色泽浅杂质少，适宜出口，价格比滴水法松香要高。
同-级松香，滴水法与蒸汽法的质量大相迳庭， 商家在购买时-定要区分清楚。
提取dna过程中，怎样去除蛋白质，rna及多糖等杂质？
提取基因组dna过程中，如何去除蛋白质，多糖和脂类等生物大分子 不同生物（植物、动物、微生物）的基因组DNA的提取方法有所不同; 不同种类或同一种类的不同组织因其细胞结构及所含的成分不同，分离方法也有差 异。在提取某种特殊组织的DNA时必须参照文献和经验建立相应的提取方法, 以获得可用的DNA大分子。
尤其是组织中的多糖和酶类物质对随后的酶切、PCR反应等有较强的抑制作用,因此用富含这类物质的材料提取基因组DNA时, 应考虑除去多糖和酚类物质。 本实验以水稻幼苗为材料,学习基因组DNA提取的一般方法。 DNA 一、材料 水稻幼苗 二、设备 移液器，冷冻高速离心机，台式高速离心机，水浴锅，陶瓷研钵，50ml离 心管（有盖）及5ml和1.5ml离心管，弯成钩状的小玻棒。 三、试剂 1、提取缓冲液：100mmol/L TrisCl, pH8.0, 20mmol/L EDTA, 500mmol/L NaCl, 1.5% SDS。 2、提取缓冲液：18.6g葡萄糖，6.9g二乙基二硫代碳酸钠，6.0gPVP，240ul巯基乙醇，加水至300ml。
3、80:4:16/氯仿:戊醇:乙醇 4、 RnaseA母液：配方见第一章。
5、其它试剂：液氮、异丙醇、TE缓冲液，无水乙醇、70%乙醇、3mol/L NaAc。 四、操作步骤：
（一）水稻幼苗或其它禾木科植物基因组DNA提取 1. 在50ml离心管中加入20ml提取缓冲液, 60水浴预热。
2. 水稻幼苗或叶子5-10g, 剪碎, 在研钵中加液氮磨成粉状后立即倒入预热 的离心管中, 剧烈摇动混匀, 60水浴保温30-60分钟(时间长,DNA产量高), 不时摇动。
3. 加入20ml氯仿/戊醇/乙醇溶液, 颠倒混匀(需带手套, 防止损伤皮肤)，室温下静置5-10分钟, 使水相和有机相分层(必要时可重新混匀)。
4. 室温下5000rpm离心5分钟。
5. 仔细移取上清液至另一50ml离心管,加入1倍体积异丙醇,混匀,室温下放置片刻即出现絮状DNA沉淀。 6. 在1.5ml eppendorf中加入1ml TE。用钩状玻璃棒捞出DNA絮团,在干净吸水纸上吸干,转入含TE的离心管中,DNA很快溶解于TE。 7. 如DNA不形成絮状沉淀,则可用5000rpm离心5分钟, 再将沉淀移入TE管中。这样收集的沉淀,往往难溶解于TE,可在60水浴放置15分钟以上，以帮助溶解。 8. 将DNA溶液3000rpm离心5分钟, 上清液倒入干净的5ml离心管。 9. 加入5μl RNaseA(10μg/μl), 37 10分钟, 除去RNA(RNA对DNA的操作、分析一般无影响，可省略该步骤）。 10. 加入1/10体积的3mol/L NaAc及2×体积的冰乙醇,混匀,-20放置20分钟左右,DNA形成絮状沉淀。